1.1. Настоящие Санитарные правила и нормативы (далее— Санитарные правила) разработаны в соответствии с Законами Республики Узбекистан закон Республики Узбекистан «О государственном санитарном надзоре» от 3 июля 1992 года с изменениями и дополнениями 6 мая 1995 года и 15 апреля 1999 года (Ведомости Верховного Совета Республики Узбекистан, 1992 г., № 9, -статья. 355; Ведомости Олий Мажлиса Республики Узбекистан, 1995 г.,№ 6, статья. 118; 1999 г.,№ 5, статья. 124). «Об охране здоровья граждан» от 29 августа 1996 года с изменениями и дополнениями от 15 апреля 1999 года (Ведомости Олий Мажлиса Республики Узбекистан, 1996 г.,№ 19, статья. 128; 1999 г.,№ 5, -статья. 124), «О качестве и безопасности пищевой продукции» от 30 августа 1997 года (Ведомости Олий Мажлиса Республики Узбекистан, 1997 г.,№ 9, статья. 239).

1.2. Санитарные правила «Требования к определению безопасности пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ)» предназначены для органов государственной исполнительной власти, предприятий, организаций, учреждений и иных юридических лиц (далее— организации), граждан предпринимателей без образования юридического лица, должностных лиц и граждан, деятельность которых осуществляется в области обращения пищевой продукции и сельскохозяйственного продовольственного сырья, для учреждений санитарно-эпидемиологической службы, научных центров, кафедр, осуществляющих токсикологическую и гигиеническую оценку безопасности пищевой продукции.

1.3. Требования, изложенные в настоящих санитарных правилах в отношении пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), применяются на этапах экспертизы и регистрации, а также при разработке и постановке их на производство, промышленном производстве, хранении, транспортировании, закупке, ввозе в страну и реализации (далее — при обращении), при разработке нормативной и технической документации, регламентирующей вопросы обращения пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ).

1.4. Гигиенические требования к веществам, материалам, в том числе вспомогательным и упаковочным, контактирующим с пищевой продукцией, содержащей ГМИ, устанавливаются специальными санитарными правилами и нормами.

Продовольственное сырье — объекты биологического, органического и неорганического происхождения, используемые для производства пищевых продуктов.

Пищевой продукт — продукт животного, растительного, минерального или биосинтетического происхождения, предназначенный для употребления в пищу человеком, как в натуральном, так и в переработанном виде.

Компонент — вещество животного, растительного, микробного или минерального происхождения, а также природные или синтезированные пищевые добавки, используемые при подготовке или производстве пищевого продукта или присутствующие в готовом продукте в исходном или измененном виде.

Качество пищевой продукции — совокупность характеристик, которые обуславливают потребительские свойства и пищевую ценность продуктов.

Безопасность пищевой продукции — отсутствие опасности для жизни и здоровья людей нынешнего и будущих поколений.

Генная инженерия — совокупность приемов, методов и технологий, в том числе технологий получения рекомбинантных рибонуклеиновых (РНК) и дезоксирибонуклеиновых (ДНК) кислот, по выделению генов из организма.

Генная инженерная деятельность — деятельность, осуществляемая с использованием методов генной инженерии и генно-инженерно-модифицированных организмов.

Генетически модифицированный источник — организм или несколько организмов, любые неклеточные, одноклеточные или многоклеточные образования, способные к воспроизводству или передаче наследственного генетического материала, отличные от природных организмов, полученные с применением методов генной инженерии и содержащие генно-инженерный материал, в т. ч. гены, их фрагменты, или комбинацию генов.

2.1. Санитарные правила «Требования к определению безопасности пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ)» устанавливают гигиенические требования по определению безопасности для человека пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), а также требования по соблюдению указанных нормативов при разработке нормативной и технической документации на них и их обращения.

2.2. Настоящие Санитарные правила разработаны с целью обеспечения единого, научно-обоснованного подхода к оценке безопасности пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) на этапах разработки, экспертизы, регистрации и обращения.

2.3. При разработке новых видов пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) и их усовершенствовании, ввозе, а также при разработке (изменении) технологических процессов юридическими лицами, осуществляющими разработку, обеспечивается обоснование их соответствия критериям безопасности, срокам годности, требованиям по их соблюдению на этапах обращения, а также методам контроля.

2.4. Разработчик новой пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) (или) ее производитель обязаны включить в нормативную и техническую документацию показатели ее качества и безопасности, гигиенические нормативы, требования по обеспечению указанных нормативов в процессе производства, хранения, транспортирования и реализации продукции, а также требования к ее упаковке и маркировке, сроки годности и методы контроля качества и безопасности продукции.

2.5. Качество и безопасность каждой партии (серии) пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) подтверждается производителем в удостоверении о качестве и маркируется соответствующим образом.

2.6. Постановка на производство (ввоз) пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) допускается только после разрешения Министерства здравоохранения Республики Узбекистан и проведения регистрации в соответствии с настоящими Правилами и процедурой, устанавливаемой Министерством здравоохранения Республики Узбекистан.

2.7. Постановка на производство (ввоз) пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), допускается только при наличии:

токсиколого-гигиенической экспертизы и регистрации пищевой продукции, полученной из ГМИ в ДГСЭН МЗ РУз;

экологической экспертизы материалов запланированного производства Госкомприродой РУз;

2.8. Импортируемая на территорию Республики Узбекистан пищевая продукция, содержащая генетически модифицированные источники (ГМИ) должны отвечать требованиям действующих в Республике Узбекистан санитарных правил и гигиенических нормативов, если иное не оговорено международными соглашениями.

2.9. Организации, осуществляющие производство и поставку импортируемых на территорию Республики Узбекистан пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), обязаны зарегистрировать их в соответствии с настоящими Правилами.

2.10. Не допускается реклама пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), не прошедшей Государственную регистрацию в Министерстве здравоохранения Республики Узбекистан.

3.1. Проведение гигиенической экспертизы и регистрации пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) осуществляется в соответствии с настоящими Правилами и в порядке, установленном Министерством здравоохранения Республики Узбекистан.

3.2. Гигиеническая экспертиза и регистрация пищевой продукции, «держащей генетически модифицированные источники (ГМИ) включает следующие процедуры:

первичную экспертную оценку документов и материалов, характеризующих данную продукцию;

определение потребности в проведении необходимых исследований;

экспериментальные токсикологические, гигиенические и медико-биологические исследования;

проведение комплекса необходимых санитарно-химических, санитарно-микробиологических и других видов исследований, в соответствии с требованиями СанПиН Р Уз за № 0138-03;

комплексную экспертную оценку результатов с учетом полученных в ходе исследований данных;

оформление регистрационного удостоверения на пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), присвоение номера, включение в реестр.

3.3. Для проведения работ по гигиенической экспертизе и регистрации пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ТМИ) ее производитель, поставщик или полномочный представитель предоставляют следующие документы:

заявку установленной формы с указанием полных реквизитов производителя или поставщика;

акт отбора проб установленной формы, в котором указывается дата, место отбора образцов, их количество, наименование продукции, юридический адрес предприятия-изготовителя, дата производства, фамилии, должности и подписи лиц, отбиравших образцы;

при наличии посредника — доверенность от производителя на проведение работ по регистрации пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) с указанием получателя регистрационного удостоверения и его владельца;

образцы пищевой продукций, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) в количестве, определенном действующим порядком экспертизы. В случае проведения токсикологических или клинических испытаний количество необходимых образцов определяется дополнительно.

3.4. Для пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), производимых в Узбекистане, представляются:

нормативная или техническая документация (технические условия, технологическая инструкция, рецептура), оформленная в соответствии с установленными требованиями;

пояснительная записка, описывающая пищевую продукцию, содержащую генетически модифицированные источники (ГМИ), область ее применения, рекомендации по применению, противопоказания, ограничения по применению при их наличии;

потребительская этикетка или ее проект, заверенный производителем;

материалы (оригинальные и литературные для аналогов) по токсиколого-гигиенической и медико-биологической оценке пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ);

санитарно-гигиеническая характеристика производства, выданная центром Госсанэпиднадзора по месту производства.

3.5. Для импортируемой пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) представляются:

результаты генной идентификации, определенной лабораторией генетики;

сертификаты качества и безопасности фирмы-изготовителя, содержащие данные о показателях безопасности, ингредиентный состав и его характеристику, сроки годности, условия хранения;

потребительская этикетка или ее проект, заверенная производителем;

материалы (оригинальные и литературные для аналогов) по токсиколого-гигиенической и медико-биологической оценки, протоколы или заверенные копии результатов испытаний, в которых указаны учреждения, проводившие эти испытания, схема проведения испытаний и результаты в сравнении с контрольной группой;

гигиенический сертификат, в котором указывается, что производство данной продукции осуществляется в соответствии с национальными и/или международными требованиями (требования GMP — Good manufacture practice, стандартам Международной организации стандартизации — ISO 9000, 9001, 9002) или Сертификата национальных и/или международной («EuroNett») организаций о соответствии производства стандартам 150 9000—9002. Декларация фирмы -изготовителя о соответствии производства указанным выше требованиям ISO может быть представлена в виде специальных знаков на бланках фирмы.

Все материалы представляются в оригинале или нотариально заверенные копии в переводе на узбекский или русский языки.

3.6. Учреждение (организация) для проведения токсикологических исследований на безопасность определяется ДГСЭН МЗ РУз в зависимости от вида, состава ГМИ и исследовательских направлений научных центров и лабораторий.

3.7. Оценка пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) по санитарно-химическим показателям безопасности осуществляется аттестованными МЗ РУз и аккредитованными в установленном порядке органами государственного санитарно-эпидемиологического надзора при гигиенической сертификации, после проведения токсикологических исследований и разрешения МЗ РУз.

3.8. В случае отсутствия или непредставления необходимых документов о наличии в составе пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) неразрешенных в Республике Узбекистан компонентов и лекарственного сырья, содержании сильно действующих компонентов, являющихся лекарственными средствами в терапевтических дозах, может быть принято решение об отказе в регистрации.

3.9. Экспертиза пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), предназначенной для детей первых трех лет жизни, не производится в связи с необходимостью ограничения его применения детьми.

3.10. По итогам экспертизы уполномоченным учреждением госсанэпидслужбы Республики Узбекистан готовится регистрационное удостоверение или мотивированный отказ в адрес заявителя.

3.11. В случае обращения по поводу перерегистрации пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), связанного с изменением или увеличением числа фирм-поставщиков, ДГСЭН МЗ Республики Узбекистан в порядке, установленном Минздравом Республики Узбекистан, выдается документ, подтверждающий право поставки и реализации данной продукции на территории Республики Узбекистан. Вышеуказанный документ выдается только при наличии доверенности от фирмы-изготовителя, подтверждающей права фирмы-поставщика на распространение данного вида продукции.

3.12. При выдаче «Регистрационного удостоверения» на отечественный вид пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), уполномоченное учреждение госсанэпидслужбы Республики Узбекистан направляет информацию в территориальный центр Госсанэпиднадзора по месту его производства (разработки) для осуществления Госсанэпиднадзора за соблюдением установленных требований при обращении.

4.1. Токсикологическая оценка безопасности пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ), проводится в соответствии с настоящими правилами, с учетом принципов Международной системы «GLP» (качественной лабораторной практики), принятых ФАО/ВОЗ в целях повышения качества и законности исследований, используемой для определения безопасности пищевой продукции.

4.2. Термины, касающиеся организации оборудования для исследования:

средства исследования — персонал, помещения и исполнительные отделы, которые необходимы для проведения неклинических исследований для оценки безопасности для здоровья человека. Для исследований, которые проводятся в нескольких местах, средствами исследования считаются те, где находится Директор исследования;

место проведения исследования — это место, где проводятся фазы исследований;

управляющий средствами исследования — человек (люди), который имеет полномочия и ответственность за проведение, организацию и функционирование средств исследования;

спонсор — лицо, которое полномочно, поддерживает и/или представляет на рассмотрение неклинические исследования по оценке безопасности для здоровья человека и окружающей среды;

главный научный сотрудник — лицо, которое на всех участках исследования действует от имени Директора и несет ответственность за порученную стадию исследования. Ответственность Директора исследования за всеобщее проведение исследования не может быть передано Главному научному сотруднику. Это включает в себя одобрение плана исследований и его корректировка, одобрение заключительного отчета и обеспечение соблюдения всех принципов токсикологических исследований;

программа по контролю за качеством — определенная система, включая персонал, которая независима от проведения исследования и предназначена для обеспечения соответствия управления средствами исследования;

стандарты проведения процедур — процедуры, зафиксированные в документах, где описывается проведение исследований или какая-нибудь другая деятельность, но не определенная детально в плане или в стандартах по исследованию;

главное расписание — это собранная информация для содействия в применении рабочей нагрузки и планирования в исследованиях средств исследований;

неклинические исследования оценки безопасности для здоровья человека и окружающей среды — эксперимент или множество экспериментов, в которых объект исследуется в лабораторных условиях или в простой среде для получения данных о его качествах и безопасности, и предназначенного для соответствующего регулятивного органа;

план исследования — документ, в котором определяются объекты и экспериментальное расписание проведения их исследования, а также поправки к ним;

изменение плана исследования — намеренное изменение или поправка в план после его принятия;

отклонение от плана исследования — непреднамеренное отклонение от плана исследования после его принятия;

система исследования — медико-биологические, физические или химические системы или их комбинация, используемая в исследовании;

первичные данные — вся документация и все сообщения по средствам исследования в оригинале или их утвержденные копии, которые являются результатом первичных наблюдений и деятельности исследования. Например, гистоморфологические препараты органов и тканей экспериментальных животных, фотографии, микрофильмы, наблюдения, данные от автоматической аппаратуры, а также средства хранения данных на период, который определен ниже;

образец — материал, состоящий из одной системы исследования для проверки, анализа или сохранения;

экспериментальная начальная дата — дата, где начало проведения исследования зафиксировано;

экспериментальная последняя дата — последняя дата, при которой были собраны данные об исследовании;

вступительная дата исследования — дата, при которой Директор исследования подписал план исследования;

завершающая дата исследования — дата, при которой Директор исследования подписывает заключительный отчет (доклад);

объект исследования — предмет исследования;

вспомогательный объект — предмет предназначаемый для обеспечения сравнения с основным объектом исследования;

партия — определенное количество или множество объектов исследования или вспомогательных объектов, полученных за периода производства, которые должны иметь одинаковые свойства и соответствовать своему назначению.

4.3. Схема токсикологической оценки безопасности пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) у экспериментальных животных:

4.3.1. Экспериментальные рационы. Общевиварный рацион крыс (на 1 крысу массой 130—240 г)

Рацион, рекомендуемый институтом питания РАМН

Состав витаминной смеси на 100 г смеси

Водорастворимые витамины 0,1% от количества сухих веществ рациона.

Состав солевой смеси

Приготовление жирорастворимых витаминов

4.3.2. Исследуемые показатели Интегральные показатели

• Общее состояние животных (ежедневные наблюдения).

• Для контроля за массой тела животных взвешивают в первый месяц опыта — 1 раз в неделю, в дальнейшем 1—2 раза в месяц и перед забоем.

• На забое определяют абсолютную массу внутренних органов и рассчитывают относительную массу внутренних органов.

Биохимические показатели

Биохимические показатели определяются при забое животных.

4.3.3. Морфологические исследования

Все животные, погибшие в ходе эксперимента, вскрываются и составляется протокол вскрытия. На забое проводятся морфологические исследования, изложенные в таблице.

4.4. Оценка гигиенических показателей пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ)

Необходимость проведения тех или иных гигиенических исследований для каждого вида пищевой продукции, полученной из генетически модифицированных источников, определяется экспертом на основании требований, изложенных в СанПиН РУз за № 0138-03, с учетом химического состава исходной аналогичной продукции, полученной традиционным способом без использования генной инженерии.

4.4.1. Показатели безопасности

4.4.2. Показатели пищевой ценности

4.5. Показатели субстанционных и функциональных свойств пищевой продукции.

В настоящее время отсутствуют стандартизованные методы определения функциональных свойств и результаты измерений должны носить сравнительный характер по отношению к препаратам или коммерческим продуктам, произведенным из немодифицированного пищевого сырья.

4.6. Определение биологической ценности и усвояемости пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ).

Биологическую ценность белков определяют химическими и биологическими методами, а усвояемость — только биологическим.

4.6.1. Химический метод

В соответствии с рекомендациями ФАО/ВОЗ (116) для определения биологической ценности белков химическим методом используют метод расчета аминокислотного скора с коррекцией на усвояемость, основанный на анализе и сопоставлении содержания незаменимых аминокислот в исследуемых белках относительно их уровня в справочной аминокислотной шкале с последующей коррекцией полученных величин на коэффициент усвояемости.

Для изучения аминокислотного состава белков проводят их гидролиз с последующим определением содержания аминокислот на автоматических анализаторах. Для большей точности определения рекомендуется использовать пять типов гидролиза каждого белка, в т. ч. три кислотных гидролиза, отличающихся лишь по продолжительности (24, 48, 72 ч.), специальный кислотный гидролиз с предварительным окислением надмуравьиной кислотой для определения серосодержащих аминокислот в виде цистеиновой кислоты и метионинсульфона и щелочной гидролиз для определения триптофана. При этом для всех незаменимых аминокислот, исключая серосодержащие и триптофан, строится кривая их содержания в зависимости от вышеуказанной продолжительности кислотного гидролиза и по максимальному значению на ней оценивают уровень аминокислоты.

Методы гидролиза белков:

высокобелковые концентраты с продолжительностью гидролиза 24, 48, 72 ч.

низкобелковые продукты, содержащие углеводы и /или липиды, с продолжительностью гидролиза 24, 48, 72 ч.

для определения серосодержащих аминокислот;

для определения триптофана.

Определение содержания аминокислот

Определение содержания свободных аминокислот осуществляют на автоматических анализаторах аминокислот в пяти видах гидролиза каждого исследуемого белка в соответствии с инструкцией для конкретного вида анализатора.

Расчет аминокислотного скора

Аминокислотный скор (АС) белков рассчитывают для каждой незаменимой аминокислоты путем соотношения ее содержания в 100 г исследуемого белка к ее же содержанию в справочной аминокислотной шкале.

Для расчета АС используют справочную аминокислотную шкалу, предложенную экспертами ФАО/ВОЗ:

За величину АС исследуемого белка принимают наименьшее из полученных значений.

Расчет биологической ценности

Биологическую ценность белка определяют путем коррекции установленной величины АС на коэффициент усвояемости (У) данного белка. Значения «У» в виде величин истиной усвояемости для различных белков, полученных в исследованиях с участием человека доставляют:

Формула расчета аминокислотного скора с коррекцией на коэффициент усвояемости (АСУ), т. е. биологической ценности, является следующей:

При этом, если получаемая величина превышает единицу, то значение биологической ценности приравнивается к единице и белок считается полноценным; если расчетная величина меньше единицы, то она отражает конкретное значение биологической ценности и тип лимитирующей белок незаменимой аминокислоты.

4.6.2. Биологический метод

Для определения биологической ценности и усвояемости белков на экспериментальных животных (для этого чаще всего применяют линейных белых крыс) возможно использование двух подходов: одноуровневые по содержанию белка в корме животных эксперименты с целью сравнительного изучения биологической ценности и усвояемости одновременно нескольких образцов белков и много-уровневые исследования для получения более объективной информации о качестве белков. Во всех случаях используют полусинтетические диеты.

Схема экспериментов:

1. Животные — линейные белые крысы одного пола с исходной массой тела около — 50 г.

2. Длительность эксперимента — 4 недели: последние 5 дней — обменный период.

3. Содержание животных — индивидуальное в обменных клетках.

4. Опытный (опытные) или контрольный (казеин) белки являются единственным источником азота в корме животных. В случае исследования белка, содержащегося в многокомпонентных пищевых продуктах, при составлении корма учитывается содержание в этих продуктах других пищевых веществ.

5. Корм приготовляют ежедневно; его потребление и потребление воды не ограничивают.

6. Одноуровневые исследования:

• количество групп животных — одна контрольная (казеин) и опытная или опытные в зависимости от количества испытуемых образцов белка;

• число животных в каждой группе — 10;

• содержание белка в корме 9% (по калорийности);

• в случае необходимости расчета истинных значений аминокислотной ценности и усвояемости белков вводится дополнительная группа крыс (10—15 животных), которые содержат в индивидуальных обменных клетках на безбелковой, но энергетически эквивалентной другим диете в течение всего эксперимента.

7. Многоуровневые исследования:

• количество групп животных — 5 опытных (для каждого исследуемого белка) и 5 контрольных (для казеина);

• число животных в каждой группе — 10;

• содержание белка (опытного или контрольного) в корме — 3, 6, 9, 12 и 18% (но калорийности). Вводится дополнительная группа животных на безбелковой диете.

8. Критерии оценки: масса тела ежедневно (в обменном периоде взвешивание не производится); поедаемость корма (ежедневно, за обменный период отдельно), экскреция азота с калом (за обменный период).

9. Рассчитывают для каждого уровня белка в корме кажущиеся или истинные значения биологической ценности (коэффициент эффективности белка — КЭБ) и усвояемости (У) по следующим формулам.

MТ — привес массы тела за экспериментальный период;

МТ_м — потеря массы тела за экспериментальный период, крысами, потреблявшими безбелковую диету;

Б_э — количество потребленного белка за экспериментальный период.

Б₀ — количество потребленного белка за ооменкыи период;

К — количество белка, экскретированного с калом за обменный период;

К_бб — количество белка, экскретированного с калом за обменный период крысами, потреблявшими безбелковую диету.

10. В многоуровневом варианте исследований на графике зависимости величины любого из этих показателей.

Необходимость проведения тех или иных специальных методов исследования определяется специалистом ДГСЭН МЗ Р Уз.

5.1. Изучение влияния продуктов, полученных из генетически модифицированных источников, на функцию воспроизводства с выявлением возможного эмбриотоксического, гонадотоксического и тератогенного действия.

Исследования проводятся на белых линейных крысах. Животные разбиваются на 3 группы, в каждой группе 10 самцов и 25 самок. Исходная масса самок не менее 180 г, исходная масса самцов не менее 200 г. 1-ая контрольная группа крыс (самцы и самки) получает на протяжении всего эксперимента общевиварный или полусинтетический рацион; 2-ая контрольная группа (самцы и самки) получает общевиварный или полусинтетический рацион с включением исследуемого продукта, полученного традиционным способом в агравированном количестве; опытная группа крыс (самцы и самки) получает общевиварный или полусинтетический рацион с включением аналогичного продукта, полученного из генетически модифицированных источников в том же количестве, что и крысы 2-ой контрольной группы. Животные находятся на этих рационах 30 дней до спаривания, во время спаривания, беременности, лактации. Полученное потомство находится на этих рационах до момента половой зрелости. Исследуются 5 поколений крыс.

5.1.1. Изучение влияния продукта, полученного из генетически модифицированных источников на пренатальное развитие потомства

Для спаривания в клетку к двум самкам подсаживают вечером одного самца, утром осуществляют микроскопирование влагалищных мазков. Первый день беременности определяют по наличию сперматозоидов во влагалищных мазках. По 10 беременных самок из каждой группы забивают на 20-ый день беременности. Плоды извлекают из рогов матки и обследуют визуально для обнаружения видимых аномалий развития, после этого плоды взвешивают. После наружного осмотра плоды каждого помета делят на 2 группы. Одну фиксируют в жидкости Буэна и используют для изучения внутренних органов. Другую фиксируют в 96-%-ном этаноле и используют для изучения состояния скелета (2—3 плода от приплода). Подсчитывают количество желтых тел, количество живых эмбрионов, количество погибших эмбрионов (мест резорбции). Вычисляют общую эмбриональную смертность, смертность эмбрионов до и после имплантации.

5.1.2. Изучение влияния продукта, полученного из генетически модифицированных источников, на постнатальное развитие потомства

По 15 беременных самок в каждой группе оставляют до родов и проводят изучение потомства: количество крысят, родившихся у одной самки, их внешний вид, фиксируют количество мертворожденных животных, потомство взвешивают при рождении, затем еженедельно. Учитывают следующие показатели физиологического развития крысят: сроки отлипания ушных раковин, открытия глаз, прорезывания резцов, покрытия шерстью, пол животных. Наблюдения за потомством осуществляют ежедневно. Рассчитывают выживаемость потомства на 30-ый день.

5.2. Исследование возможного мутагенного действия

Выявление мутагенного действия испытуемых продуктов на соматических и половых клетках проводится на лабораторных животных, а изучение генных мутаций на микроорганизмах или дрозофиле.

Продукт скармливается лабораторным животным в различных количествах в качестве составной части диеты в разные сроки в зависимости от характера опыта. На подопытных и контрольных животных проводятся исследования:

• цитогенетические исследования метафазным методом в соматических клетках (костный мозг, лимфоциты крови животных);

• изучение генетических изменений в половых клетках методом выявления доминантных летальных мутаций;

• изучение генных мутаций производится по выбору на микроорганизмах или дрозофиле; микробиологические методы используются для первичной оценки на мутагенность. Для этих целей чаще всего используют штаммы микроорганизмов Salmonella thyphmurium. В зависимости от характера опыта используются следующие животные:

• Линейные мыши (С57 В1/6 или другие чувствительные к мутагенам), самцы, вес 18—20 г.

• Гибридные мыши, самки, вес 18—20 г.

Для оценки мутагенного действия испытуемого продукта изучают хромосомные аберрации в клетках костного мозга и доминантные летальные мутации (ДЛМ) в половых клетках подопытных и контрольных животных. Цитогенетические исследования проводят метафазным методом. Согласно методу, животных, получавших испытуемый и контрольный продукт, через 24 часа после последнего скармливания забивают (предварительно за 2 часа до забоя вводят внутрибрюшинно колхицин для накопления метафаз) и берут костный мозг из 2-х бедренных костей. После гипотенизации клеток в термостате с помощью 0,5 %-ного раствора КС1 и фиксации смесью этанол + уксусная кислота готовят цитогенетические препараты. От каждого животного анализируют 70—100 клеток на стадии метафазы деления ядра. В опытах используют мышей-самцов линии С57 В1/6 в возрасте 2 месяца, весом около 20 г. Считается, что животные этой линий наиболее чувствительны к мутагенам.

Генетические изменения в половых клетках изучают методом выявления доминантных летальных мутаций у мышей-самцов С57 В1/6. Проведение эксперимента сводится к следующему: подопытным и контрольным животным скармливают испытуемый продукт в течение 30 дней. После периода скармливания 15 подопытных и 13 контрольных самцов ссаживают с интактными виргинными самками линии СВА в соотношении 1:2 с целью их скрещивания. Подсадка самок к подопытным самцам производится еженедельно на протяжении 3-х недель, что дает возможность оценить действие испытуемого продукта на половые клетки в постмейотическом периоде — сперматиды и зрелые спермин. Отсаженных беременных самок убивают методом смещения шейных позвонков на 15—17 день беременности, вскрывают, подсчитывают число желтых тел, количество живых и мертвых эмбрионов. По этим данным рассчитывают индексы мутагенности: доимплантационную, постимплантационную смертность, индуцированную летальность. В случае необходимости рекомендуется проводить исследования на генные мутации на дрозофиле или микроорганизмах.

Метод исследования генных мутаций в зародышевых клетках дрозофилы, основанный на определении в х-хромосоме самцов дикого типа (Д 32) рецессивных летальных мутаций, передающихся через дочерей самкам второго поколения.

Метод выявления на микроорганизмах мутагенной активности трансгенного продукта, подвергнутого метаболическим процессам в организме млекопитающих (тест Эймса и метод промежуточного хозяина).

5.3. Оценка потенциальной аллергенности пищевых продуктов, получаемых из генетически модифицированных источников

Для оценки потенциальной аллергенности продукции, получаемой из генетически модифицированных источников используется экспериментальная модель системной анафилаксии, возникающей у лабораторных животных (крыс) при их внутрибрюшинной сенсибилизации с последующим введением разрешающей дозы гомологичного белкового антигена внутривенно.

Метод исследования заключается в количественной оценке изменений тяжести протекания системной анафилаксии и уровня циркулирующих сенсибилизирующих антител (субклассов JgGi + JgG4) у крыс, получающих в составе рациона тестируемый продукт, полученный из генетически модифицированных источников, в сравнении с животными, получающими аналогичный продукт, изготовленный из традиционных источников.

Принцип метода

Метод основан на количественной оценке тяжести реакции системной анафилаксии, возникающей при внутрибрюшинной (в/б) сенсибилизации взрослых крыс самцов линии ВИСТАР пищевым антигеном-овальбумином куриного яйца (ОВА) с последующим внутривенным (в/в) введением сенсибилизированным животным разрешающей дозы того же белка внутривенно.

Определение включает следующие этапы:

• В/б сенсибилизация крыс антигеном — ОВА, адсорбированном на корпускулярном носителе-гидроксиде алюминия.

• Одновременное с процессом сенсибилизации кормление животных рационами, содержащими тестируемый и контрольный продукт.

• Взятие крови для определения антител и в/в введение разрешающей дозы ОВА, количественная оценка тяжести развивающегося анафилактического шока. Иммуноферментное определение уровней циркулирующих специфических антител к ОВА.

• Математическая обработка результатов исследования и составление заключения о потенциальной аллергенности исследуемого продукта.

Животные

Исследования выполняют на крысах самцах линии ВИСТАР с исходной массой 150—180 г. Животных содержат на стандартном рационе вивария, не содержащем яичного белка, в течение 7—10 дней перед началом эксперимента по 5—6 животных в клетке. Контролируют массу тела крыс, отстающих в приросте массы тела в течение периода адаптации удаляют.

В течение периода кормления экспериментальным рационом (всего 29 дней) животные получают в составе рациона тестируемый и контрольный продукт в квоте, не превышающей 20% общей калорийности рациона.

Формируют 2 группы крыс по 25 животных в каждой. Животные 1-й группы получают тестируемый продукт, а животные 2-й группы — контрольный продукт в составе своих рационов. На 1-ый, 3-й, 45-й день опыта крыс в/б сенсибилизируют ОВА, а на 21-й день эксперимента вводят дополнительную («бустерную») дозу антигена, уменьшенную в 10 раз в сравнении с первоначальной. Кормление рационами продолжают до утра 29-го дня эксперимента. Далее крыс помещают в домики для в/в манипуляций и вводят раствор ОВА в/в, после чего оценивают на протяжении 24 ч. тяжесть развивающейся реакции анафилаксии. Непосредственно перед введением разрешающей дозы у крыс отбирают 0,1—0,2 мл крови из хвостовой вены для определения уровня специфических антител.

Примечание: в случае, если тестируемые продукты имеют жидкую консистенцию (молочные продукты, напитки), вместо добавления в диету допускается вводить их животным ежедневно внутрижелудочно через зонд, снабженный гладкой оливой диаметром не более 2 мм.

Материалы и оборудование

• Овальбумин куриного яйца, ОВА, 5-кратно перекристаллизованный лиофилизированный препарат.

• Раствор хлорида натрия 0,15 моль/л (физиологический Ра Шприц инъекционный «Рекорд» на 1,0 мл с иглой для в/б инъекций).

• Шприц инъекционный «Рекорд» на 20 мл с зондом для в/ж введения.

• Алюмокалиевые квасцы K[A1(S0₄)2] х 12ШО, препарат квалификации ч. д. а.

• Гидроксид натрия NaOH, препарат квалификации ч. д. а.

• Центрифуга лабораторная с горизонтальным ротором ОПН-3.

• Универсальный индикатор.

• Домики для в/в манипуляций на крысах, из оргстекла или дерева.

• Шприц инъекционный «туберкулиновый» с иглой для в/в введений.

• Комплект реактивов и оборудования для иммуноферментного анализа.

Приготовление антигена и сенсибилизация

Навеску 10 мг ОВА растворяют в 1,0 мл физиологического раствора (ФР) и добавляют 1,0 мл 10%-ного водного раствора алюмо-калиевых квасцов. На этой стадии раствор должен оставаться прозрачным. После этого добавляют по каплям при перемешивании 0,6 мл водного раствора NaOH 1 моль/л до образования плотного белого осадка. Проверяют рН по универсальному индикатору: рН = 5 ± 1. Осадок отделяют центрифугированием 5 мин. при 3000 об/мин. Супернатант декантируют, а осадок промывают 10 мл ФР. Центрифугирование и промывку повторяют 3 раза. Окончательно осадок гидроксида алюминия с адсорбированным ОВА диспергируют в 20 мл ФР.

Полученную дисперсию антигена вводят крысам строго внутрибрюшинно в количестве 0,2 мл (по 100 мкг ОВА в 1 дозе).

Для проведения «бустерной» инъекции готовят антиген по той же схеме, за исключением того, что исходная навеска ОВА уменьшается в 10 раз (1,0 мг). Введение разрешающей дозы и оценка тяжести системной анафилаксии. Перед введением разрешающей дозы ОВА крыс помещают в домики для в/в манипуляций. Хвост животного погружают на 10—15 мин. в воду с температурой 37 ± 1. С. С помощью иглы для в/в введений и шприца типа «туберкулиновый» отбирают 0,2—0,3 мл крови для определения антител. После этого строго в/в вводят разрешающую дозу 5 мг ОВА в 0,5 мл ФР (10 мг /мл ОВА). Внимание! Подкожное попадание раствора белка не допускается!

Симптомы системной анафилаксии развиваются у крыс, обычно, на протяжении первых 2—5 мин. после введения разрешающей дозы. Тяжесть реакции оценивают в баллах в соответствии со шкалой (см. таблицу).

Окончательный подсчет числа летальных исходов осуществляют на протяжении первых 24 часов после введения разрешающей дозы.

Иммуноферментное определение специфических антител

В основу метода анализа антител к ОВА у крыс положен принцип непрямого твердофазного иммуноферментного теста на полистероле (indirect ELISА).

В лунки полистерольных планшет вносят по 1,0 мкг ОВА в 0,1М Na-бикарбонатном буфере рН 9,7 ± 0,1 и оставляют на 16 ч. в холодильнике. По окончании адсорбции антигена буфер удаляют путем промывки 0,01 М Na-фосфатным буфером рН 7,3 ±0,1 с 0Д5М NaCl и 0,1 % Твин-20 (Твин-PBS). В лунки на 30 мин. вносят по 200 мкл 1-%-ного раствора желатины вТвия-PBS. Отмывку повторяют, после чего вносят в лунки по 100 мкл стандартов крысиных антител к ОВА, очищенных методом аффинной хроматографии, или исследуемых сывороток крови крыс в разведении 1:2000. Разведения выполняют на PBS с 0,2 %-ного бычьего сывороточного альбумина (DSA-PBS). Планшеты инкубируют 90 мин. при 22° С со встряхиванием, после чего 5-кратно отмывают Твин-PBS и вносят по 100 мкл кроличьих антител к JgG крысы, коньюгированных с пероксидазой, в разведении 1:1000 в BSA-PBS. Инкубацию и отмывку повторяют, после чего проводят реакцию со 100 мкл субстрата 0,04%-ного о-фенилендиамина и 0,04%-ного Н₂О₂ в 0,1 М Na -цитрат-фосфатном буфере рН 6,00 ± 0,05 в течение 10 мин. при 37° С. Реакцию останавливают добавлением 100 мкл 1 М H₂SO₄ Оптическую плотность измеряют при длине волны 492 нм на фотометре АКИ-Ц-01.

Концентрацию антител определяют по стандартному графику в полулогарифмических координатах методом линейной интерполяции на ЭВМ.

5.4. Математическая обработка результатов эксперимента и оценка результата Тяжесть реакции анафилактического шока в каждой из групп животных оценивают следующими показателями:

• процентом летальных реакций анафилаксии;

• анафилактическим индексом, рассчитанным по формуле:

N — число крыс в группе;

/ — номер крысы;

г — тяжесть реакции анафилаксии в баллах.

Достоверность различия тяжести реакции анафилаксии между двумя группами определяют в соответствии с U-тестом углового преображения Фишера. Для этого для каждого из указанных безразмерных показателей (выраженных в долях единицы) рассчитывают преобразованную долю выработки по формуле:

р — долевой показатель;

arcsin — определяется в радианах.

Далее для двух сравниваемых групп №№ 1 и 2 рассчитывают величину {/-критерия по формуле:

Различие по данному показателю признается достоверным (нуль гипотеза отклоняется, Р < 0,04), если U> 1,96.

Различие в тяжести реакции анафилаксии между двумя группами в целом признается достоверным, если достоверно различие хотя бы по одному из двух вышеуказанных показателю. Достоверность различий средних значений и дисперсий уровней антител к ОВА в двух группах определяют, соответственно, с использованием Т-теста Стьюдента и F-теста на остаточную дисперсию Фишера. Анализу подвергают показатели оптической плотности (D492) концентрации антител (мг/мл) и десятичного логарифма концентрации антител. Все расчеты выполняют на ЭВМ с использованием стандартного пакета программ EXCEL5.0a.

5.6. Иммунологические исследования. Исследования на крысах

Исследования проводятся по схеме хронического эксперимента при тех же условиях кормления и содержания. Через 1 месяц и через 6 месяцев от начала эксперимента определяют следующие показатели:

Исследования на мышах

Исследование иммунодулириющего действия продукта на гормональное звено иммунитета.

Изучение иммуномодулирующего действия продукта на гуморальное звено иммунитета оценивается в тесте определения уровня гемаглютининов к эритроцитам барана. Испытываемый продукт скармливают мышам в течение 21 дня (опытная группа — 10 мышей). Контролем служат 2 группы мышей (20 мышей). Используются мыши 2-х оппозитных линий: С57 BL/6 и СВА. После курса вскармливания опытной и одной контрольной группе мышей вводят внутрибрюшинно 0,5 мл эритроцитов барана (концентрация 20 млн клеток/мл), вторая контрольная группа остается интактной. Кровопускание проводится на 7, 14 и 21 день. Сыворотку крови титруют в реакции гемагтлютинации общепринятым методом. Подсчитывают среднюю арифметическую титра гемагтлютининов в каждой группе мышей.

5.7. Изучение иммуномодулирующего действия продукта на клеточное звено иммунитета Изучение иммуномодулирующего действия продукта на клеточное звено иммунитета определяют в реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) к эритроцитам барана. Используются мыши двух оппозитных линий. Испытываемый продукт скармливают мышам в течение 21 дня (опытная группа мышей — 10). После курса скармливания опытной и одной контрольной группе вводят подкожно в межлопаточную область эритроциты барана в дозе 1 млн клеток на мышь в объеме 0,1 мл. Вторая контрольная группа остается интактной. На пятый день всем мышам в подушечку одной задней лапы вводят разрешающую дозу эритроцитов барана в концентрации 1 млрд клеток на мышь в объеме 0,02 мл. В контрлатеральную подушечку лапы в том же объеме — 0,95-%-ный раствор натрия хлорида. Местную воспалительную реакцию оценивают через 18—20 часов путем определения веса опытной и контрольной лапок. Интенсивность местной реакции определяют по индексу реакции.

5.8. Изучение продукта как сенсибилизирующего агента к продуктам метаболизма организма

Изучение продукта как сенсибилизирующего агента к продуктам метаболизма организма изучают в тесте чувствительности мышей к гистамину.

Используются мыши линии С57 BL/6. Испытываемый продукт скармливают опытной группе (10 мышей) в течение 21 дня. Контрольная группа — 10 мышей. После курса скармливания опытной и контрольной группам мышей вводят внутрибрюшинно гистамин гидрохлорид в дозе 2,5 мг на мышь в объеме 0,5 мл физиологического раствора. Реакцию учитывают через 24 ч по % гибели мышей.

5.9. Изучение влияния продукта на естественную резистентность мышей к сальмонеллам мышиного тифа.

Изучение влияния продукта на естественную резистентность мышей к сальмонеллам мышиного тифа проводят на модели внутрибрюшинного заражения мышей линии C57BU6 десятикратно отличающимися дозами S.typhimurium штамм 415. Испытываемый продукт скармливают мышам в течение 21 дня (опытная группа — 30 мышей). Контрольная группа — 30 мышей. После курса скармливания мышей заражают тремя дозами культуры: от 1000 до 10 микробных клеток на мышь (соблюдая 10-кратный интервал). Наблюдение за животными производится в течение 14 дней. Подсчитывают ЛД50 в опытной и контрольной группе, % гибели животных по каждой дозе и проводят сравнительный анализ результатов.

5.10. При необходимости в зависимости от характера изучаемой генетической модификации могут проводиться дополнительные исследования.

Данные исследования проводятся в соответствии с действующими нормативными документами и в установленном порядке.

В клинических исследованиях на добровольцах следует использовать три уровня дозировки:

1. Нормальный диетический уровень — количество пищевого продукта, которое типично потребляется человеком.

2. Максимальный диетический уровень — максимальное количество пищевого продукта, которое может быть использовано для ежедневного потребления в течение длительного срока совместно с другой пищей.

3. Максимально выполнимое введение — максимальное количество пищевого продукта, которое можно употребить в течение короткого срока (обычно ограничивается физиологической вместимостью желудочно-кишечного тракта).

7.1. Условия проведения клинических испытаний:

Испытания проводятся на 2-х группах здоровья: добровольцев по 10—20 человекв каждой группе в условиях стационара. Испытуемая группа получает продукт, полученный из генетически модифицированного источника, контрольная группа — аналогичный продукт из градационного источника. Сначала постепенно доводят количество потребляемого продукта питания до максимально возможного введения. Если не наблюдается проявлений непереносимости или других проявлений, то потребление на этом уровне сохраняют в течение 48 часов, контролируя общее состояние добровольцев, физиологические параметры, биохимические показатели крови и т. д. Инструментальные и лабораторные методы исследования используются на усмотрение врача. В случае обнаружения серьезных отрицательных проявлений испытание заканчивается до выяснения причин.

Если не наблюдались отрицательные проявления, то дозировка понижается до максимального диетического уровня и испытание продолжается 90 дней с проведением следующих видов исследований:

7.2. Оценка органолептических свойств продуктов и их переносимости

Изучение органолептических свойств осуществляется с использованием анкетно-опросного метода. Оценивается вкус, запах, консистенция.

Переносимость оценивается путем клинического наблюдения по субъективным и объективным признакам. Исследуется состояние:

• кожных покровов;

• системы пищеварения;

• сердечно-сосудистой системы и других органов и систем организма.

7.3. Рекомендуемые биохимические показатели

7.4. Рекомендуемые гематологические показатели периферической крови:

Гемоглобин;

Количество эритроцитов;

Цветной показатель;

Содержание лейкоцитов и лейкоцитарная формула

Фибриноген;

Фибринолитическая активность;

Протромбиновое время.

7.5. Рекомендуемые иммунологические показатели

Показатели гуморального иммунитета. Количество В клеток, (СД 19.СД го);

Иммуноглобулины основных классов;

Показатели клеточного иммунитета. Фенотипирование Т-клеток;

Неспецифический иммунный ответ. Компоненты системы комплемента Определение числа фагоцитирующих клеток и фагоцитарного индекса.

Генерация супероксидного аниона нейтрофилами. В качестве дополнительных можно рекомендовать:

1. Проведение исследований на протяжении 6-ти месяцев. В этих исследованиях наблюдают от 100 до 500 добровольцев, потребляющих новый продукт на максимальном диетическом уровне. Контролируют общее состояние добровольцев, физиологические параметры, биохимические показатели крови и т. д.

2. Проведение длительных популяционных исследований, которые позволят оценить долговременные последствия влияния потребления новых продуктов питания на большое количество людей и идентифицировать маленькие субпопуляции (менее чем 0,1 /о населения), которые могут иметь особые проблемы с новыми продуктами питания. В зависимости от природы (характера) продукта питания испытания проводят на 100—300 добровольцах, получающих новые продукты питания на нормальных диетических уровнях в течение 1,5—2 лет. В дополнение к контролю жизненно важных признаков, физиологических параметров, биохимических показателей крови и т. д. также необходимо обеспечить сбор информации относительно влияния этой продукции на деторождение и количество онкологических заболеваний.

8.1. Необходимость проведения тех или иных исследований по данному разделу и для каждого конкретного вида пищевой продукции, полученной из генетически модифицированных источников, определяется Министерством здравоохранения и проводится лабораториями (центрами) Института генетики АН Р Уз (или центрами «Биоинженерия»).

8.2. Методы генетической оценки пищевой продукции, содержащей генетически модифицированные источники (ГМИ) устанавливаются Институтом генетики АН РУз и утверждаются Агентством Узстандарт.